Bestimmungsschlüssel für die aquatischen Makrophyten (Gefäßpflanzen, Armleuchteralgen und Moose) in Deutschland (Klaus van de Weyer & Carsten Schmidt): Unterschied zwischen den Versionen
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− | Abb. 1-3: Teile von Blättern: Bh = Blatthäutchen, Bs = Blattscheide, Bst = Blattstiel, Bsp = Blattspreite, Nb = Nebenblatt | + | Abb. 1-3: Teile von Blättern: Bh = Blatthäutchen, Bs = Blattscheide, Bst = Blattstiel, Bsp = Blattspreite, Nb = Nebenblatt (Zeichnungen: Dagmar Wassong) |
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Abb. 1-6: Tiefe von Spreiteneinschnitten: a = gelappt (-lappig), b = gespalten ( -spaltig), c = geteilt (-teilig), d = geschnitten (-schnittig), e = gefingert, f = gefiedert<br /> | Abb. 1-6: Tiefe von Spreiteneinschnitten: a = gelappt (-lappig), b = gespalten ( -spaltig), c = geteilt (-teilig), d = geschnitten (-schnittig), e = gefingert, f = gefiedert<br /> | ||
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[[File:AquMakroph p10-Abb-1-11 Stängelanatomie Potamogeton Dagmar Wassong.png | 360 px | Abb. 1-11: Stängelanatomie bei ''Potamogeton'': En = Endodermis (O- oder U-Typ), IL = Interlakunare Leitbündel, Ph = Pseudohypodermis, Sk = Sklerenchym, SL = Subepi<br />dermale Leitbündel, 1 = Proto-Typ, 2 = Trio-Typ, 3 = Eight-Typ, 4, 5 = Oblong-Typ, 6 = Four-Typ]] | [[File:AquMakroph p10-Abb-1-11 Stängelanatomie Potamogeton Dagmar Wassong.png | 360 px | Abb. 1-11: Stängelanatomie bei ''Potamogeton'': En = Endodermis (O- oder U-Typ), IL = Interlakunare Leitbündel, Ph = Pseudohypodermis, Sk = Sklerenchym, SL = Subepi<br />dermale Leitbündel, 1 = Proto-Typ, 2 = Trio-Typ, 3 = Eight-Typ, 4, 5 = Oblong-Typ, 6 = Four-Typ]] | ||
− | Abb. 1-11: Stängelanatomie bei ''Potamogeton'': En = Endodermis (O- oder U-Typ), IL = Interlakunare Leitbündel, Ph = Pseudohypodermis, Sk = Sklerenchym, SL = Subepi<br />dermale Leitbündel, 1 = Proto-Typ, 2 = Trio-Typ, 3 = Eight-Typ, 4, 5 = Oblong-Typ, 6 = Four-Typ | + | Abb. 1-11: Stängelanatomie bei ''Potamogeton'': En = Endodermis (O- oder U-Typ), IL = Interlakunare Leitbündel, Ph = Pseudohypodermis, Sk = Sklerenchym, SL = Subepi<br />dermale Leitbündel, 1 = Proto-Typ, 2 = Trio-Typ, 3 = Eight-Typ, 4, 5 = Oblong-Typ, 6 = Four-Typ (Zeichnungen: Dagmar Wassong) |
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[[File:AquMakroph p10-Abb-1-12 Blütenaufbau Dagmar Wassong.png | 360px | Abb. 1-12: Aufbau von Blüten: Bb = Blütenboden, Fk = Fruchtknoten, Gr = Griffel, Na = Narbe, Stb = Staubbeutel, Stf = Staubbfaden, Pe = Petale (Kronblatt), S = Sepale (Kelchblatt)]] | [[File:AquMakroph p10-Abb-1-12 Blütenaufbau Dagmar Wassong.png | 360px | Abb. 1-12: Aufbau von Blüten: Bb = Blütenboden, Fk = Fruchtknoten, Gr = Griffel, Na = Narbe, Stb = Staubbeutel, Stf = Staubbfaden, Pe = Petale (Kronblatt), S = Sepale (Kelchblatt)]] | ||
− | Abb. 1-12: Aufbau von Blüten: Bb = Blütenboden, Fk = Fruchtknoten, Gr = Griffel, Na = Narbe, Stb = Staubbeutel, Stf = Staubbfaden, Pe = Petale (Kronblatt), S = Sepale (Kelchblatt) | + | Abb. 1-12: Aufbau von Blüten: Bb = Blütenboden, Fk = Fruchtknoten, Gr = Griffel, Na = Narbe, Stb = Staubbeutel, Stf = Staubbfaden, Pe = Petale (Kronblatt), S = Sepale (Kelchblatt) (Zeichnungen: Dagmar Wassong) |
Die Süßgräser haben am Grund der Blüte (0-) 2 (-4) sterile Hüllspelzen. Hierauf folgen Deckspelze(n) und Vorspelze. Die Hüll- und Deckspelzen können Grannen aufweisen. | Die Süßgräser haben am Grund der Blüte (0-) 2 (-4) sterile Hüllspelzen. Hierauf folgen Deckspelze(n) und Vorspelze. Die Hüll- und Deckspelzen können Grannen aufweisen. | ||
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[[File:AquMakroph p11-Abb-1-13 Süßgrasährchen Dagmar Wassong.png | 240px | Abb. 1-13: Süßgras-Ährchen mit 3 Einzelblüten: 1 = Einzelblüte, 2 = Vorspelze, 3 = Deckspelze mit Granne, 4 = Hüllspelze]] | [[File:AquMakroph p11-Abb-1-13 Süßgrasährchen Dagmar Wassong.png | 240px | Abb. 1-13: Süßgras-Ährchen mit 3 Einzelblüten: 1 = Einzelblüte, 2 = Vorspelze, 3 = Deckspelze mit Granne, 4 = Hüllspelze]] | ||
− | Abb. 1-13: Süßgras-Ährchen mit 3 Einzelblüten: 1 = Einzelblüte, 2 = Vorspelze, 3 = Deckspelze mit Granne, 4 = Hüllspelze | + | Abb. 1-13: Süßgras-Ährchen mit 3 Einzelblüten: 1 = Einzelblüte, 2 = Vorspelze, 3 = Deckspelze mit Granne, 4 = Hüllspelze (Zeichnungen: Dagmar Wassong) |
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File:AquMakroph p11-Abb-1-14d Dolde Dagmar Wassong.png | doldiger Blütenstand | File:AquMakroph p11-Abb-1-14d Dolde Dagmar Wassong.png | doldiger Blütenstand | ||
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− | Abb. 1-14: Ausbildungen von Blütenständen | + | Abb. 1-14: Ausbildungen von Blütenständen (Zeichnungen: Dagmar Wassong) |
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Aktuelle Version vom 3. Juli 2013, 12:35 Uhr
Quelle: | van de Weyer, K. & Schmidt, C. 2007. Bestimmungsschlüssel für die aquatischen Makrophyten (Gefäßpflanzen, Armleuchteralgen und Moose) in Deutschland mit Taxaliste und Abbildungen. Version 1.1 (20.05.2007) PDF-Datei beim Ministerium für Umwelt, Gesundheit und Verbraucherschutz (MUGV) des Landes Brandenburg Hier für die Online-Nutzung überarbeitet. (Autorisierte Zweitpublikation) |
Hinweis: | Dieser Schlüssel ist mit den Autorennamen gekennzeichnet und die Mitarbeit ist auf Klaus van de Weyer und Carsten Schmidt beschränkt. Auf der Diskussionsseite sind Kritik und Verbesserungsvorschläge willkommen! |
Zitiervorschlag: | van de Weyer, K. & Schmidt, C. 2010. Bestimmungsschlüssel für die aquatischen Makrophyten (Gefäßpflanzen, Armleuchteralgen und Moose) in Deutschland. Offene Naturführer Vol. 1, http://offene-naturfuehrer.de/web/Aquatische_Makrophyten_(van_de_Weyer_und_Schmidt) |
Dieser Beitrag stammt von einem Mitglied der Gesellschaft zur Erforschung der Flora Deutschlands (GEFD). |
Auftraggeber: Ministerium für Ländliche Entwicklung, |
Bearbeitung: Dr. Klaus van de Weyer |
lanaplan Lobbericher Str. 5 |
Einleitung
Der vorliegende Bestimmungsschlüssel berücksichtigt die in Deutschland nachgewiesenen aquatischen Makrophyten. Hierunter werden diejenigen Arten verstanden, die aquatische Formen ausbilden. Bezugsebene ist der mittlere Wasserstand, nicht berücksichtigt sind z. B. Arten des Grünlandes, die bei Hochwässern komplett überflutet werden können. Ebenfalls nicht aufgenommen sind in diesem Schlüssel Landformen der aquatischen Makrophyten. Der Bestimmungsschlüssel basiert auf den von Wiegleb (1991) und van de Weyer (1999) beschriebenen Wuchsformen der Makrophyten. Für die Bestimmung wurden die im Literaturverzeichnis angegebenen Arbeiten verwendet. Die Nomenklatur folgt Wisskirchen & Haeupler (1998): Farn- und Blütenpflanzen mit folgenden Ausnahmen:
- Baldellia: van der Meijden (2005)
- Callitriche: Landsdown (2006)
- Juncus: Kirschner et al. (2002)
- Potamogeton-Hybriden: Wiegleb & Kaplan (1998)
- Ranunculus Subgenus Batrachium: Wiegleb (2005a)
- Zannichellia: van der Meijden (2005) (s.a. van Vierssen 1982)
Die Bezeichnungen von Sippen, die in diesen Arbeiten nicht enthalten sind, folgen „The International Plant Names Index“. An dieser Stelle sei ausdrücklich auf Bergmeier (1994) hingewiesen, der verschiedene taxonomische Problemfälle darstellt (z. B. Zostera angustifolia (Hornem.) Rchb., vgl. Raabe 1973). Die Nomenklatur der Armleuchteralgengewächse folgt Blümel & Raabe (2004), die der Moose Koperski et al. (2000). Der Calliergon-Scorpidium-Drepanocladus-Komplex wurde nach Hedenäs (2003) benannt. Die folgenden Personen gaben Anregungen zum Bestimmungsschlüssel oder Hinweise: U. W. Abts (Krefeld), Prof. Dr. W. Bennert (Bochum), Dr. K.-P. Buttler (Frankfurt/Main), Dr. Angela Doege (Miltizberg), Dr. Annick Garniel (Kiel), Dr. Thomas Gregor (Vechta), Andreas Hussner (Düsseldorf), Norbert Neikes (Nettetal), Frank Pätzold (Baden-Baden), Uwe Raabe (Marl), Frau Dr. S. Schneider (Oslo), Joop van Raam (Hilversum) und Prof. Dr. G. Wiegleb (Cottbus) sowie die Teilnehmer mehrerer Makrophyten-Bestimmungskurse. Peter Bolbrinker (Altkalen), J. Bruinsma (Breugel, Niederlande), Dr. Ekkehard Foerster (Kleve), Dr. Ulf Schmitz (Düsseldorf) und Peter Wolff (Saarbrücken) lasen das Manuskript. Ihnen allen sei herzlich gedankt.
Einführung in die bestimmungsrelevanten Merkmale der Gefäßpflanzen
Bestimmungsmerkmale
Zum Bau der Pflanzen sei ausdrücklich auf Rothmaler (2005) verwiesen. Die nachfolgenden Ausführungen sind hieran stark angelehnt. Nachfolgend werden einige der für den vorliegendenen Bestimmungsschlüssel notwendigen Merkmale beschrieben:
Abb. 1-1: Form von Sprossachsen (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-2: Stellung von Blättern an der Sprossachse (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Blätter
- Blattrosette: Blätter zu mehreren scheinquirlig am Grunde des Sprosses (Isoëtiden) oder an der Spitze des Sprosses (Callitriche)
- Blatthäutchen (Ligula): der röhrige oder bauchige Blattgrund, der den Stängel umschliesst
- Nebenblatt (Stipula): zipfel- oder blattartige Ausgliederungen des Blattgrundes. Bei Potamogeton sind die Nebenblätter scheinbar achselständig. Sie können den unteren Teil des Blattes einschließen (z. B. Potamogeton pectinatus). Für die Bestimmung ist von Bedeutung, ob die Nebenblätter im unteren Teil verwachsen oder offen sind. Dazu ist es mitunter erforderlich, die jüngsten Nebenblätter frei zu legen und unter dem Binokular mit einer Präpariernadel die Nebenblätter zu untersuchen.
- Blattrippen: Nerven auf der Spreite z. B. bei Gräsern; bei Moosen die Mittelrippe (siehe Bryiden (Moose))
- Winterknospen (Turio, Winter-Kurzsprosse): knospenartige Sprossenden, die sich von der Mutterpflanze lösen können und der Vermehrung dienen
Abb. 1-3: Teile von Blättern: Bh = Blatthäutchen, Bs = Blattscheide, Bst = Blattstiel, Bsp = Blattspreite, Nb = Nebenblatt (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-4: Gestalt von Blattspreiten (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-5: Blattformen (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-6: Tiefe von Spreiteneinschnitten: a = gelappt (-lappig), b = gespalten ( -spaltig), c = geteilt (-teilig), d = geschnitten (-schnittig), e = gefingert, f = gefiedert
a–d: einfaches Blatt, e-f: zusammengesetztes Blatt (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-7: Blattrandformen (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-8: Anheftung von Blättern an der Sprossachse (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-9: Spreitengrund-Formen (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-10: Formen von Spreitenspitzen (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Stängelanatomie
Bei der Gattung Potamogeton kann es erforderlich sein, die Stängelanatomie zu untersuchen. Hierzu wird vom mittleren bzw. oberen Teil des Sprosses ein Querschnitt angefertigt. Bei Herbarmaterial müssen die gepressten Stängelteile zunächst ca. 3 Tage in einer 50 : 50 Mischung aus Glycerol und Ethanol aufgeweicht werden. Für die Bestimmung relevant sind die Form der Endodermis-Zellen (U- bzw. O-förmig), die Anordnung bzw. Anzahl der Leitbündel im Zentralzylinder, das Vorhandensein einer Pseudohypodermis sowie von subepidermalen bzw. interlakunaren Leitbündeln.
Abb. 1-11: Stängelanatomie bei Potamogeton: En = Endodermis (O- oder U-Typ), IL = Interlakunare Leitbündel, Ph = Pseudohypodermis, Sk = Sklerenchym, SL = Subepi
dermale Leitbündel, 1 = Proto-Typ, 2 = Trio-Typ, 3 = Eight-Typ, 4, 5 = Oblong-Typ, 6 = Four-Typ (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Blüte
Die Blüte gliedert sich in die Blütenhülle, die Fruchtblätter (Gynoeceum) und die Staubblätter (Androeceum). Die Blütenhülle kann in Kelch- und Kronblätter differenziert sein, die zusammen das Perianth bilden. Die Wasserhahnenfüße (Ranunculus Subgenus Batrachium) weisen an der Basis der Kronblätter Nektarien auf, deren Form (z. B. halbmond- oder birnenförmig) für die Bestimmung wichtig sein kann.
Abb. 1-12: Aufbau von Blüten: Bb = Blütenboden, Fk = Fruchtknoten, Gr = Griffel, Na = Narbe, Stb = Staubbeutel, Stf = Staubbfaden, Pe = Petale (Kronblatt), S = Sepale (Kelchblatt) (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Die Süßgräser haben am Grund der Blüte (0-) 2 (-4) sterile Hüllspelzen. Hierauf folgen Deckspelze(n) und Vorspelze. Die Hüll- und Deckspelzen können Grannen aufweisen.
Abb. 1-13: Süßgras-Ährchen mit 3 Einzelblüten: 1 = Einzelblüte, 2 = Vorspelze, 3 = Deckspelze mit Granne, 4 = Hüllspelze (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Abb. 1-14: Ausbildungen von Blütenständen (Zeichnungen: Dagmar Wassong)
Wurzeln
Die Gefäßpflanzen besitzen Wurzeln mit spezialisiertem Leitgewebe. Demgegenüber weisen Moose und Armleuchteralgen Rhizoiden auf, die kein spezialisiertes Leitgewebe haben (siehe Chariden).
Konservierung
Pflanzen, die außerhalb des Wassers nicht zusammenfallen, werden zunächst von anhaftenden Substanzen (z. B. Erde) befreit. Anschließend legt man die Pflanzen auf einen Einlegebogen (z. B. Zeitung-Doppelseite). Die Blüten, Blätter etc. werden ausgebreitet. Überstehende Teile werden umgeknickt. Die Pflanzen werden danach incl. Beschriftung (s. u.) in eine Pflanzenpresse eingelegt. Je nach Wasseranteil kann es erforderlich sein, das Einlegepapier zwischenzeitlich zu wechseln. Die trockenen Pflanzen werden auf stabilen Zeichenkarton mit weißen gummierten Papierstreifen aufgeklebt. Auf einen Bogen werden immer nur Pflanzen einer Sippe und eines Fundortes aufgeklebt. Zur Beschriftung eignen sich Ettiketten, die die folgenden Angaben enthalten:
- Art mit Autorenname
- Fundort (Land, Bundesland, Kreis, geografische Bezeichnung), nach Möglichkeit mit Angabe der Nr. der Topografischen Karte 1 : 25.000 und weitere Differenzierung in Quadrant bzw. Viertelquadrant
- Standort (ökologische Bezeichnung)
- Sammeldatum
- Sammler („leg.“)
- Bestimmer („det.“)
- Ggf. Bezeichnung des Herbariums und fortlaufende Nr.
- Art mit Autorenname
Pflanzen, die außerhalb des Wassers zusammenfallen (pinseln), werden in ein mit Wasser gefülltes Becken gelegt. Die Proben werden ggf. gesäubert. Unter die Pflanzen wird ein weißes Papier geschoben. Nach vorsichtigem Ablassen des Wassers wird das Papier mit den Pflanzen aus dem Becken gehoben, ggf. präpariert und dann ein zweites weißes Papier auf die Probe gelegt. Danach wird die Probe mit den beiden weißen Blättern zwischen Zeitungspapier gepresst. Als Alternative zu weißem Papier hat sich auch Backpapier bewährt, von dem sich die getrockneten Pflanzen gut ablösen lassen. Die Methode eignet sich auch zur Konservierung von Armleuchteralgen (siehe Chariden). Moose werden hingegen in Moostüten aufbewahrt (siehe Bryiden (Moose)).
Bestimmungsschlüssel für die Hauptgruppen
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Die zitierte und weiterführende Literatur findet sich in der separaten Literatursammlung. |